Antes de abrir: temperar el vial
Un vial que sale de un refrigerador a 4 °C o de un congelador a −20 °C está por debajo del punto de rocío del aire del laboratorio. Si se destapa en frío, el vapor de agua ambiental condensa sobre la torta liofilizada, que es higroscópica, y el material absorbe humedad antes de que se le añada disolvente alguno.
El procedimiento correcto es dejar el vial cerrado sobre la mesa hasta que alcance temperatura ambiente, entre quince y treinta minutos según el volumen. En climas de humedad relativa alta la espera no es opcional.
Al retirar el sello, la torta debe presentarse como un cilindro blanco compacto. Un polvo colapsado, pegado a la pared del vial o con aspecto vidriado indica que el material sufrió una excursión térmica; no debe usarse para un experimento cuya validez dependa de la concentración declarada.
Elección del disolvente
El agua bacteriostática es agua estéril para inyección con alcohol bencílico al 0.9 % como conservador. El conservador permite extracciones múltiples del mismo vial a lo largo de días sin que prolifere flora contaminante, y es el disolvente habitual cuando el material se usará en varias sesiones.
El agua estéril simple no lleva conservador. Es apropiada cuando el vial se consume completo en un solo uso o cuando el alcohol bencílico interfiere con el sistema experimental, algo a verificar en ensayos celulares sensibles.
Los análogos acilados de GLP-1 y GIP se solubilizan en medio acuoso estéril, con mejor comportamiento a pH ligeramente alcalino. Preparar concentraciones muy por encima de lo necesario aumenta la probabilidad de autoasociación y de formación de fibrillas.
Cálculo de concentración
La concentración resultante es la masa nominal del vial dividida entre el volumen de disolvente añadido: un vial de 10 mg reconstituido con 2 mL rinde 5 mg/mL, y con 1 mL rinde 10 mg/mL. Es aritmética directa, y el error más común no está en la fórmula sino en asumir que el vial contiene exactamente su masa nominal.
La masa declarada es nominal. El contenido real depende del llenado y del contenido de agua residual reportado en el certificado de análisis, y para trabajo cuantitativo debe corregirse con el dato de peso neto o de contenido peptídico del COA, no con la etiqueta.
Registrar en la bitácora el número de lote, el volumen añadido, la fecha y hora de reconstitución y la concentración calculada. Sin ese registro, una solución en el refrigerador es material no identificable.
Técnica
Desinfectar el tapón de bromobutilo con una torunda de alcohol isopropílico al 70 % y dejarlo secar; el alcohol actúa por evaporación, no por contacto húmedo.
Insertar la aguja con el bisel hacia la pared del vial y dejar que el disolvente descienda por ella hasta la torta. No dirigir el chorro sobre el polvo: el impacto directo genera espuma y la espuma es interfase aire-líquido, que es donde los péptidos se desnaturalizan.
Una vez añadido el volumen, dejar reposar el vial de dos a cinco minutos y después girarlo con suavidad hasta que la solución esté transparente. Nunca agitar en vórtex ni sacudir.
En destinos de altiplano, por encima de los 1 800 m, el diferencial de presión respecto del punto de sellado hace que el disolvente entre con más avidez de lo habitual; conviene compensar con una adición aún más lenta.
Errores frecuentes
Agitar en vórtex para acelerar la disolución. Es la causa más común de pérdida de material: la agitación genera espuma, la espuma agrega el péptido y el agregado ya no se redisuelve.
Abrir el vial en frío y provocar condensación sobre la torta.
Calcular la concentración sobre la masa de etiqueta cuando el experimento exige exactitud, en lugar de usar el contenido peptídico del certificado.
Reconstituir el vial completo cuando sólo se necesitará una fracción en las próximas semanas. La solución tiene una vida útil mucho menor que el liofilizado.
Congelar y descongelar la solución repetidamente. Cada ciclo agrega proteína de forma irreversible; conviene alicuotar tras la reconstitución si va a haber usos separados en el tiempo.
Preguntas frecuentes
- ¿Cuál es la diferencia entre agua bacteriostática y agua estéril?
- El agua bacteriostática contiene alcohol bencílico al 0.9 % como conservador, lo que permite extracciones múltiples del mismo vial durante días. El agua estéril no lleva conservador y está pensada para un solo uso.
- ¿Cómo se calcula la concentración tras reconstituir?
- Dividiendo la masa del vial entre el volumen de disolvente añadido. Un vial de 10 mg con 2 mL de agua bacteriostática rinde 5 mg/mL. Para trabajo cuantitativo, la masa debe tomarse del contenido peptídico del certificado de análisis y no de la etiqueta.
- ¿Por qué no se debe usar vórtex?
- Porque la agitación vigorosa genera espuma, y la interfase aire-líquido de la espuma desnaturaliza y agrega el péptido. El agregado no vuelve a solución, de modo que la concentración real cae por debajo de la calculada.
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Comparativas
Compuestos
Referencias
- [1]Knudsen LB, Lau J. The discovery and development of liraglutide and semaglutide. Front Endocrinol. 2019. doi:10.3389/fendo.2019.00155 PMID:31031702
- [2]Lau J, Bloch P, Schäffer L, et al. Discovery of the once-weekly glucagon-like peptide-1 analog semaglutide. J Med Chem. 2015. doi:10.1021/acs.jmedchem.5b00726 PMID:26308095